Instituto de Nutrición e Higiene de los Alimentos
Beatriz Basabe,1 Laura Rossi,2 Marika
Ferrari3 y Francesco Branca4
Descriptores DeCS: DEFICIENCIA DE ACIDO ASCORBICO/orina; HEMORRAGIA GINGIVAL/orina; COLAGENO/análisis; CROMATOGRAFIA LIQUIDA DE ALTA PRESION/métodos; REFUGIADOS.
La vitamina C es un nutriente esencial de la dieta del hombre y otras pocas especies que carecen de la última enzima en la biosíntesis del ácido ascórbico a partir de la glucosa.1 Está involucrada en la síntesis, las modificaciones postraduccionales, la secreción y la maduración extracelular del colágeno.2-4
Existen 2 pasos fundamentales donde actúa la vitamina C como cofactor de enzimas en el proceso de formación del colágeno.5 El primero es en la hidroxilación de los residuos lisina y prolina.6,7 Esta reacción es realizada por las enximas prolil y lisil hidroxilasa que presentan un ión Fe2+ en su sitio catalítico. En este caso la función del ácido ascórbico es proveer electrones para mantener el hierro metálico en su forma reducida y de esta forma estimular a la enzima.8
El segundo paso es en la formación de las fibras de colágeno, las cuales se encuentran reforzadas por entrecruzamientos covalentes. Estas uniones se forman entre los residuos lisina e hidroxilisina, y la única enzima que participa en este proceso es la lisil oxidasa que presenta también como cofactor al ácido ascórbico.9 La deficiencia de esta vitamina provoca entonces que las moléculas de colágeno que se obtienen sean menos estables a la temperatura corporal.
Estudios realizados en modelos animales han demostrado que cambios en los niveles de vitamina C afectan signifi-cativamente la proporción de los entrecruzamientos piridinolina (Pyd) y deoxipiridinolina (Dpd) en hueso, aunque para los entrecruzamientos excretados en la orina la diferencia resulte menos marcada.10
El objetivo de este estudio es conocer si los entrecruzamientos del colágeno y el recambio óseo están afectados en individuos con signos clínicos de deficiencia de vitamina C y si esta afectación provoca algún cambio en la proporción piridinolina deoxipiridinolina.
El grupo control estuvo compuesto por 36 mujeres de la misma población, y su selección se realizó mediante un pareamiento por edad, talla y peso con los casos.
Se midieron el peso, la talla y se calculó el índice de masa coporal (IMC).
Las muestras de orina fueron recolectadas en las primeras horas de la mañana y conservadas a -20 °C hasta su uso. Experimentos anteriores muestran que la conservación a –20 °C no afecta el análisis.11
La concentración de los entrecruzamientos del colágeno (piridinolina y deoxipiridinolina) se determinó por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), según la técnica de Black y otros12 parcialmente modificada11 y se corrigió con la excreción de creatinina.
Para la determinación de los entrecruzamientos del colágeno se hidrolizó la orina con igual volumen de ácido clorhídrico 12 M durante 12-18 h a 109 °C. Posteriormente se mezcló el hidrolizado con ácido acético y butanol en una proporción 1:1:4 y se aplicó en una columna de celulosa microcristalina (CC31), con el fin de extraer los productos de excreción del colágeno de interés (Pyd y Dpd). El eluato obtenido se sometió a evaporación en una bomba de vacío y se diluyó en ácido heptafluorbutírico para su aplicación en HPLC.
Con el objetivo de minimizar los errores de pérdida de sustancias relacionados con la preparación de las muestras, análisis en el HPLC y de la técnica en sí, se utilizó un estándar interno de piridinolina acetilada.13
La concentración de creatinina en la orina se determinó según el método de Jaffé con desproteinización (reacción picrato-alcalino) usando el Kit No. 124192 de Boehringer Mannheim GmbH, Mannheim, Alemania. La técnica se basa en una reacción colorimétrica donde se forma un complejo entre la creatinina y el picrato en solución alcalina. La concentración de creatinina es proporcional a la intensidad de color desarrollado, el cual es medido con un espectrofotómetro con una longitud de onda de 520 nm. Se realizó siempre el análisis por duplicado y se repitieron las determinaciones con un coeficiente de variación superior al 4 %.
Se calcularon las medias y las desviaciones estándar para la edad, talla y peso. Se compararon las concentraciones de piridinolina y deoxipiridinolina y la proporción de ambos compuestos (Pyd/Dpd) entre los casos y los controles mediante la prueba t de Student.
Los valores de algunos indicadores antropométricos se presentan en la tabla. El 38,9 % de las mujeres que presentaban deficiencia vitamínica y el 25 % de los controles tenía valores de IMC< 20 kg/m2. En ninguna de las variables expuestas se aprecian diferencias significativas entre ambos grupos, lo que comprueba el correcto pareamiento realizado por talla y peso corporal.
|
|
|
|||
|
|
|
|
|
|
| Talla (cm) |
|
|
|
|
| Peso (kg) |
|
|
|
|
| IMC (kg/m2) |
|
|
|
|
En las figuras 1 y 2 se muestra el efecto de la deficiencia de vitamina
C sobre las concentraciones urinarias de los metabolitos de excreción
del colágeno: piridinolina y deoxipiridinolina. No se hallaron diferencias
significativas entre el grupo con deficiencia moderada de vitamina C y
el grupo control para ninguno de los compuestos piridínicos, pero
se encontró un incremento del 23 % en la excreción de ambos
metabolitos para las mujeres con deficiencia de vitamina con respecto a
los controles.
FIG. 1. Concentraciones urinarias de piridinolina en mujeres.
FIG. 2. Concentraciones urinarias de deoxipiridinolina en mujeres.
La proporción piridinolina/deoxipyridinolina (fig.3) no varía
de un grupo a otro. Para ambos grupos los valores encontrados resultan
inferiores a los obtenidos en un estudio realizado en adultos saludables.3,4
FIG. 3. Proporción piridinolina/deoxipiridinolina en orina.
Es importante señalar que la variabilidad en las concentraciones de piridinolina y deoxipiridinolina está dada por la incidencia de diferentes factores que afectan el metabolismo esquelético como: disponibilidad de calcio, vitamina D, realización de ejercicio físico, exposición a la luz solar, entre otras; las cuales se acentúan en las condiciones del grupo de estudio que se encuentra en un campo de refugiados.15
En diferentes estudios se ha analizado el efecto de la deficiencia de la vitamina C sobre el metabolismo del colágeno; la mayoría de ellos realizados en modelos experimentales. En uno de ellos se encontraron diferencias significativas en la excreción de deoxipiridinolina entre un grupo de deficiencia moderada de esta vitamina y un grupo con alta ingestión, pero no se utilizó ningún grupo control con consumo normal.16
Esto último unido al hecho de que el síntoma clínico que se tomó para la selección de los casos aparece en las primeras fases de la deficiencia del ácido ascórbico, significa que los primeros estadios en la deficiencia de la vitamina C no afectan significativamente el metabolismo del colágeno en el hombre, aunque comienzan a sufrir sus primeras alteraciones.
La proporción piridinolina/deoxipiridinolina es utilizada internacionalmente como uno de los marcadores del recambio óseo más importantes, que indica la presencia de alteraciones en el metabolismo del colágeno.17
En este estudio esta proporción presenta valores iguales para ambos grupos (2,47), lo que demuestra que la deficiencia de vitamina C presente en los casos afectó de forma semejante a ambos metabolitos del colágeno en el proceso de recambio óseo. Al comparar este valor con el obtenido en diferentes estudios para un grupo de adultos saludables en Europa (3-4)18 e Irlanda (3,46-3,95),19,20 encontramos que ambos grupos presentan un incremento del recambio óseo. Esto indica que toda la población de refugiados está bajo la influencia de otros factores que afectan el metabolismo esquelético mencionados con anterioridad.
Subject headings: ASCORBIC ACID DEFICIENCY/urine; GINGIVAL HEMORRHAGE/urine; COLLAGEN/analysis; CHROMATOGRAPHY HIGH PRESSURE LIQUID/methods; REFUGEES.
Recibido: 2 de marzo de 1999. Aprobado: 8 de abril de 1999.
Lic. Beatriz Basabe. Instituto de Nutrición e Higiene de los
Alimentos. Infanta No. 1158, municipio Centro Habana, Ciudad de La Habana
10300, Cuba.